Ces dernières années, le phénotype mécanique des cellules (tel que l'adhésion, l'élasticité, la rigidité), également connu sous le nom de propriétés mécaniques, s'est avéré être un identifiant valable pour distinguer les cellules saines des cellules malades. Les chercheurs du monde entier ont établi un lien entre le phénotype mécanique et le cancer, les maladies cardiovasculaires et les maladies du sang, entre autres. La microscopie à force atomique (AFM) est la technique la plus utilisée pour mesurer les propriétés mécaniques, et elle permet d'obtenir les propriétés à l'échelle nanométrique. Cependant, la manipulation de l'AFM requiert des compétences techniques élevées et, à l'origine, elle n'a pas été conçue pour les échantillons biologiques. Cependant, la possibilité d'analyser des échantillons dans l'air ou dans un liquide ces dernières années la rend plus attrayante pour le domaine du vivant. Cependant, avec les AFM actuels, il n'est pas simple d'analyser un nombre élevé de cellules ou de populations cellulaires, et il est ensuite difficile d'obtenir des résultats statistiques. Cette thèse de doctorat vise à résoudre le problème du faible débit, une méthodologie automatisée est proposée pour y parvenir. Cette méthodologie est basée sur la combinaison de deux techniques, les réseaux de cellules, et l'automatisation AFM. Les mesures mécaniques sont effectuées automatiquement en exécutant un script Jython développé, et les cellules sont immobilisées dans des positions connues proposant ici un nombre de mesures effectuées par rapport à ce qui a été trouvé dans la littérature. Premièrement, l'immobilisation est effectuée pour les microbes dans des timbres PDMS microfabriqués et les cellules de mammifères dans des réseaux de cellules commerciales (BIOSOFT et CYTOO). L'immobilisation est effectuée, dans le cas des microbes, en utilisant la technique d'assemblage convectif/capillaire atteignant ~85 % de remplissage taux. Et pour les cellules de mammifères, la technique utilisée a permis de fixer la cellule à une surface préalablement fonctionnalisée. Ensuite, l'AFM a été modifié pour effectuer les mesures automatiquement. L'automatisation a été réalisée par le développement d'un script écrit en Jython et exécuté directement dans un BioAFM (JPK Allemagne). Le script est polyvalent et a été adapté, ou il peut être adapté à plusieurs configurations d'échantillons. Le script réalise un petit nombre d'indentations (9 ou 16) sur l'échantillon, en acquérant des courbes de force de différentes régions des cellules et en réduisant en même temps le temps passé sur chaque cellule. Les résultats ont démontré que l'augmentation du nombre de cellules a un impact sur le nombre de mesures effectuées sur les cellules, et il est encore possible d'obtenir des résultats comparables à ceux rapportés dans la littérature. Pour la première fois, l'analyse de la rigidité sur ~900 cellules de levure (C. albicans) est rapportée, et il est évident la présence de deux sous-populations. Nous avons comparé des cellules de levure natives avec des cellules de levure traitées à la caspofongine. Les résultats ont été obtenus en 4 h avec 9 indentations par cellule. Pour les cellules HeLa, la comparaison a été faite entre les cellules HeLa natives et les cellules HeLa fixées ; et ~80 cellules ont été analysées en 30 minutes. Dans les deux cas (cellules de mammifères et de levure), un décalage entre les cellules natives et les cellules traitées a été observé, ce décalage est conforme à la littérature et prouve qu'il est possible de réduire le nombre d'indentations faites sur les cellules si le nombre de cellules analysées est élevé. Grâce à la quantité massive de données collectées, il a été possible d'utiliser l'apprentissage automatique, et les résultats préliminaires montrent qu'il est possible de distinguer les cellules natives des cellules traitées. La différenciation a été faite en entrant les descripteurs : rigidité, adhérence, et travail d'adhésion à l'algorithme d'apprentissage machine. Ce travail contribue à obtenir une signification statistique, ce qui est l'un des principaux inconvénients de l'analyse mécanique AFM et peut être considéré comme l'une des premières étapes pour disposer d'un outil de diagnostic à partir du microscope à force atomique.